1. 如 Buffer GTL 和 Buffer GL 产生沉淀，可在 56℃水浴溶解； 2. 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的 DNA 片段小，提取量下降； 3. 所有离心步骤均为台式离心机，室温下操作。
1. 在 1.5ml 离心管中加入 100 μl 溶液 A。 2. 将 3-10 mg 植物叶片直接加到溶液 A 中，用枪头捣碎。如果样品为种子，则将种子敲 碎，然后取一碎片（约 1/4 豌豆大小）进行后续实验步骤。 3. 95℃孵育 10 min，对于比较难裂解的样品，适当延长保温时间至 15-30 min。 4. 加入 100 μl 溶液 B，简短振荡混匀后可直接取上清为模板进行 PCR 扩增。（注：裂解液体积不要超过反应体积的 1/10，建议做梯度稀释测试以确定最佳反应体系。本产品提取 的 DNA 不能用电泳检测方法检测，只能用作扩增模板）
一、液体样品1. 将约 2 μL 液体样品（如全血、细胞培养液、病毒样品、粪便样品）加入到 50 μL 免 提取核酸释放剂中。 （注意：总液体样品用量不要超过本产品用量的 1/10。） 2. 室温放置 3 分钟；对于较难裂解的样品（如有厚壁的真菌等），则保温时间可以延长 到 10-30 分钟。 3. 简短振荡混匀后取样品裂解液直接进行 PCR 扩增或其他扩增。（注：裂解液体积最好不要超过反应体积的 1/10，对 50μL 的扩增体系，加入的裂解液不要超过5μL。由于不同的扩增体系成分不同，建议做梯度测试以确定最佳反应体系）二、组织样品 1. 将或 2 mg 的固体样品（如动物组织、植物叶片、种子等）加入到 50 μL 免提取核酸 释放剂中。（注意：总样品量不要超过 1 mg/10 μL 的比例。） 2. 95℃加热 5 分钟；对于较难裂解的样品（如石蜡组织切片、血斑等），则保温时间可 以延长到 10-30 分钟。 3. 简短振荡混匀后取样品裂解液直接进行 PCR 扩增或其他扩增。（注：裂解液体积最好不要超过反应体积的 1/10，对 50μL 的扩增体系，加入的裂解液不要超过 5μL。由于不同的扩增体系成分不同，建议做梯度测试以确定最佳反应体系）
1. 如 Buffer GL 产生沉淀，可在 56℃水浴溶解； 2. 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的 DNA 片段小，提取量下降； 3. 所有离心步骤均为台式离心机，室温下操作。
1. 如 Buffer GTL 和 Buffer GL 产生沉淀，可在 56℃水浴溶解； 2. 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的 DNA 片段小，提取量下降； 3. 所有离心步骤均为台式离心机，室温下操作； 4. 按要求在 Buffer W1 和 Buffer W2 中加入无水乙醇。
1. 细菌培养时间一般为 12-16 小时，如接种量大则应减少培养时间，过度培养会降低质 粒质量甚至导致质粒 DNA 突变； 2. 每次使用时都要注意 Buffer S2 和 S3 是否形成沉淀，如有沉淀 37℃溶解后再用； 3. 质粒的产量跟细菌量、质粒拷贝数、质粒大小和操作规范程度密切相关。