1. 切胶：用干净刀片将目的 DNA 条带切下，尽量切除不含 DNA 的凝胶。（注意：紫外线对 DNA 片段有损坏作用，切胶要迅速，避免长时间照射，同时做好眼睛及皮肤的防 护） 2. 称重：将切下的含有目的 DNA 条带的凝胶切成小块，放入 2 ml 塑料离心管中，称 重。（注意：先称一个空的 2 ml 离心管的重量，放入凝胶块后再称一次，两次重量相减得到凝胶的重 量） 3. 溶胶：加入等体积 Buffer GN，60℃水浴，每隔 2-3 min 上下振荡，直到凝胶完全溶解。加入等体积的异丙醇混匀，再加入 10μl 磁珠混匀 5 分钟。（注意：如凝胶重量为 100 mg，其体积可视为 100 μl，则加入 100 μl Buffer GN；如凝胶浓度大于 2%，所用溶胶液体积加倍） 4. 将离心管置于磁力架上静置 1 min，磁珠完全吸附后，吸去液体。 5. 将离心管从磁力架上取下，加 600 μl Buffer W2，旋涡充分混匀 30 s。（注意：Buffer W2 在使用前按要求加入无水乙醇，用后应立即盖紧瓶盖，以防乙醇挥发）6. 将离心管置于磁力架上静置 1 min，磁珠完全吸附后，吸去液体。 7. 将离心管置于磁力架上，开盖室温放置 5-10min。 （注意：乙醇残留会抑制后续的酶反应，所以晾干时要确保乙醇挥发干净。但也不要干燥过度，以 免 DNA 难以洗脱） 8. 将离心管从磁力架上取下，加入 30-50 μl Buffer EB，充分震荡 1-2 min。 9. 将离心管置于磁力架上静置 1 min，磁珠完全吸附后，小心将溶液转移至新的离心管 中，并于适当条件保存。（注意：为增加洗脱效率，可将洗脱液在 60℃预热。如需使用去离子水洗脱，可用 NaOH 调整其 pH 值在 7.0 - 8.5 ...
1. 如 Buffer GTL 和 Buffer GL 产生沉淀，可在 56℃水浴溶解； 2. 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的 DNA 片段小，提取量下降； 3. 所有离心步骤均为台式离心机，室温下操作； 4. 按要求在 Buffer W1/W2 中加入无水乙醇。
1. 估计 PCR 反应液或酶切反应液的体积，向其中加入等体积溶液 Buffer GN，充分混 匀（无需去除石蜡油或矿物油）。加入等体积的异丙醇混匀，再加入 10ul 磁珠混匀 5min。（注意：对于回收小于 150bp 的小片段可将溶液 Buffer GN 的体积增加到 3 倍以提高回收率；溶液 混匀后应呈现黄色。如果溶液的颜色为桔红色或紫色，请使用 10 ul 3M 乙酸钠（pH 5.0）将溶液的 颜色调为黄色后再进行后续操作。） 2. 将离心管置于磁力架上静置 1 min，磁珠完全吸附后，吸去液体。 3. 将离心管从磁力架上取下，加 600 ul Buffer W2，旋涡充分混匀 30 s。（注意：Buffer W2 在使用前按要求加入无水乙醇，用后应立即盖紧瓶盖，以防乙醇挥发） 4. 将离心管置于磁力架上静置 1 min，磁珠完全吸附后，吸去液体。 5. 将离心管置于磁力架上，开盖室温放置 5-10min。 （注意：乙醇残留会抑制后续的酶反应，所以晾干时要确保乙醇挥发干净。但也不要干燥过度，以 免 DNA 难以洗脱）6. 将离心管从磁力架上取下，加入 30 ~ 50 ul Buffer EB，充分震荡 1-2 min。7. 将离心管置于磁力架上静置 1 min，磁珠完全吸附后，小心将溶液转移至新的离心管 中，并于适当条件保存。 （注意：为增加洗脱效率，可将洗脱液在 60℃预热。如需使用去离子水洗脱，可用 NaOH 调整其 pH 值在 7.0 - 8.5 之间）
1. 如 Buffer GTL 和 Buffer GL 产生沉淀，可在 56℃水浴溶解； 2. 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的 DNA 片段小，提取量下降； 3. 所有离心步骤均为台式离心机，室温下操作； 4. 按要求在 Buffer W1/W2 中加入无水乙醇。
1. 缓冲液 FP1 可能会发黄，并不影响提取效果。若 Buffer QP1 或 Buffer QP2 有沉淀析 出，可在 37℃水浴溶解，摇匀后使用； 2. 所有离心步骤均为使用台式离心机，室温下离心； 3. 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的 DNA 片段较小且提取量也下降。
（注意：使用前在 BufferGP1 中加入 β-巯基乙醇，使其终浓度为 0.2%，水浴锅中 65°C 预热） 1. 取植物新鲜组织约 100 mg 或干组织约 30 mg，加入液氮充分研磨。 （注意：如果组织为较幼嫩部分，可不用液氮研磨，直接在研钵中加入 700 μl Buffer GP1 和组织一起研磨即可） 2. 将研磨后的粉末收集到一离心管（自备）中，加入 700 ul 65°C 预热的 Buffer GP1 （使用前在预热的 Buffer GP1 中加入 β-巯基乙醇，使其终浓度为 0.2%），迅速颠倒混匀或用 涡旋振荡器充分振荡混匀，然后将离心管置于 65°C 水浴 20 min，期间每隔 3 ~ 5 min 颠倒离心管混匀样品一次。 （注意：如要去除 RNA，可在上述步骤完成后加入浓度为 100mg/ml 的 RNaseA 4 μl，振荡混匀，室 温处理 5~10min） 3. 加入 700 μl 氯仿，充分混匀，12,000 rpm 离心 5 min。 （注意：如果提取的植物材料富含多酚或淀粉，可在第 3 步骤前用酚：氯仿/1：1 进行等体积抽提）4. 小心将上层水相转入一新的离心管（自备）中，加入 700 μl Buffer GP2，充分混匀。 将混匀后的溶液转入离心吸附柱中，若一次不能转移完成，可分次加入，12,000 rpm 离心 30 sec，弃收集管中废液。 5. 向吸附柱内加入 500 μl 的 Buffer W1，室温 12,000 rpm 离心 30 sec，弃收集管中废 液。 （注意：Buffer W1 是浓缩液，按要求加入乙醇，用后及时盖紧，以防乙醇挥发） 6. 向吸附柱内加入 500 μl 的 Buffer ...