1. 切胶：用干净刀片将目的 DNA 条带切下，尽量切除不含 DNA 的凝胶。（注意：紫外线对 DNA 片段有损坏作用，切胶要迅速，避免长时间照射，同时做好眼睛及皮肤的防 护） 2. 称重：将切下的含有目的 DNA 条带的凝胶切成小块，放入 2 ml 塑料离心管中，称 重。（注意：先称一个空的 2 ml 离心管的重量，放入凝胶块后再称一次，两次重量相减得到凝胶的重 量） 3. 溶胶：加入等体积 Buffer GN，60℃水浴，每隔 2-3 min 上下振荡，直到凝胶完全溶解。加入等体积的异丙醇混匀，再加入 10μl 磁珠混匀 5 分钟。（注意：如凝胶重量为 100 mg，其体积可视为 100 μl，则加入 100 μl Buffer GN；如凝胶浓度大于 2%，所用溶胶液体积加倍） 4. 将离心管置于磁力架上静置 1 min，磁珠完全吸附后，吸去液体。 5. 将离心管从磁力架上取下，加 600 μl Buffer W2，旋涡充分混匀 30 s。（注意：Buffer W2 在使用前按要求加入无水乙醇，用后应立即盖紧瓶盖，以防乙醇挥发）6. 将离心管置于磁力架上静置 1 min，磁珠完全吸附后，吸去液体。 7. 将离心管置于磁力架上，开盖室温放置 5-10min。 （注意：乙醇残留会抑制后续的酶反应，所以晾干时要确保乙醇挥发干净。但也不要干燥过度，以 免 DNA 难以洗脱） 8. 将离心管从磁力架上取下，加入 30-50 μl Buffer EB，充分震荡 1-2 min。 9. 将离心管置于磁力架上静置 1 min，磁珠完全吸附后，小心将溶液转移至新的离心管 中，并于适当条件保存。（注意：为增加洗脱效率，可将洗脱液在 60℃预热。如需使用去离子水洗脱，可用 NaOH 调整其 pH 值在 7.0 - 8.5 ...
不含染料的 MasterMix 产品在 PCR 结束后需混合适量的上样缓冲液再上样电泳， 含染料的 MasterMix 产品在 PCR 结束后可以直接上样电泳。
1. 如 Buffer GTL 和 Buffer GL 产生沉淀，可在 56℃水浴溶解； 2. 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的 DNA 片段小，提取量下降； 3. 所有离心步骤均为台式离心机，室温下操作； 4. 按要求在 Buffer W1/W2 中加入无水乙醇。
1. 估计 PCR 反应液或酶切反应液的体积，向其中加入等体积溶液 Buffer GN，充分混 匀（无需去除石蜡油或矿物油）。加入等体积的异丙醇混匀，再加入 10ul 磁珠混匀 5min。（注意：对于回收小于 150bp 的小片段可将溶液 Buffer GN 的体积增加到 3 倍以提高回收率；溶液 混匀后应呈现黄色。如果溶液的颜色为桔红色或紫色，请使用 10 ul 3M 乙酸钠（pH 5.0）将溶液的 颜色调为黄色后再进行后续操作。） 2. 将离心管置于磁力架上静置 1 min，磁珠完全吸附后，吸去液体。 3. 将离心管从磁力架上取下，加 600 ul Buffer W2，旋涡充分混匀 30 s。（注意：Buffer W2 在使用前按要求加入无水乙醇，用后应立即盖紧瓶盖，以防乙醇挥发） 4. 将离心管置于磁力架上静置 1 min，磁珠完全吸附后，吸去液体。 5. 将离心管置于磁力架上，开盖室温放置 5-10min。 （注意：乙醇残留会抑制后续的酶反应，所以晾干时要确保乙醇挥发干净。但也不要干燥过度，以 免 DNA 难以洗脱）6. 将离心管从磁力架上取下，加入 30 ~ 50 ul Buffer EB，充分震荡 1-2 min。7. 将离心管置于磁力架上静置 1 min，磁珠完全吸附后，小心将溶液转移至新的离心管 中，并于适当条件保存。 （注意：为增加洗脱效率，可将洗脱液在 60℃预热。如需使用去离子水洗脱，可用 NaOH 调整其 pH 值在 7.0 - 8.5 之间）
不含染料的 MasterMix 产品在 PCR 结束后需混合适量的上样缓冲液再上样电泳， 含染料的 MasterMix 产品在 PCR 结束后可以直接上样电泳。
1. 如 Buffer GTL 和 Buffer GL 产生沉淀，可在 56℃水浴溶解； 2. 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的 DNA 片段小，提取量下降； 3. 所有离心步骤均为台式离心机，室温下操作； 4. 按要求在 Buffer W1/W2 中加入无水乙醇。