1. 实验前在 Buffer W1 和 Buffer W2 中按标签说明加入无水乙醇； 2. 如缓冲液 Buffer GL、Buffer W1 结晶或产生沉淀，可在 56℃水浴溶解； 3. 所有离心步骤均为室温下操作。
1、细菌培养时间一般为 12 ~ 16 小时，如接种量大则应减少培养时间，过度培养会降低质 粒质量甚至导致质粒 DNA 突变； 2、每次使用时都要注意 Buffer S2 和 S3 是否形成沉淀，如有沉淀 37℃溶解后再用； 3、注意 Buffer S1，S2 和 S3 的用量比例，若细菌量增大，需按比例放大这些溶液的使用量； 4、质粒的产量跟细菌量、质粒拷贝数、质粒大小和操作规范程度密切相关，一般 1.5 ml 过夜培养菌体可收获约 10 ug 高拷贝质粒。
1、细菌培养时间一般为 12 ~ 16 小时，如接种量大则应减少培养时间，过度培养会降低 质粒质量甚至导致质粒 DNA 突变； 2、 每次使用时都要注意 Buffer S2 和 S4 是否形成沉淀，如有沉淀 37℃溶解后再用； 3、 质粒的产量跟细菌量、质粒拷贝数、质粒大小和操作规范程度密切相关。
1、Buffer BL 的加入能够改善吸附柱的吸附能力并提高吸附柱的均一性和稳定性，消除高 温潮湿或其他不良环境因素对吸附柱造成的影响。 2、 使用前请先检查 Buffer BL、Buffer GN 是否出现浑浊，如有混浊现象，可在 37℃水浴 中加热几分钟，即可恢复澄清。 3、 溶液 Buffer GN 含有 pH 指示剂，黄色，指示 pH≤7.5。 切胶时，紫外照射时间应尽量短，以免对 DNA 造成损伤。 4、 回收率与初始 DNA 量和洗脱体积有关，初始量越少、洗脱体积越小，回收率越低。
1. 如 Buffer GTL 和 Buffer GL 产生沉淀，可在 56℃水浴溶解； 2. 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的 DNA 片段小，提取量下降；3. 所有离心步骤均为台式离心机，室温下操作； 4. 按要求在 Buffer W1 和 Buffer W2 中加入无水乙醇。
1、如 Buffer GTL 和 Buffer GL 产生沉淀，可在 56℃水浴溶解； 2、 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的 DNA 片段小，提取量下降； 3、 所有离心步骤均为台式离心机，室温下操作。