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2024 - 02 - 26
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京泽培养基买5赠1购买5瓶任意货号培养基赠送一瓶PBS缓冲液(GZ20012)
2023 - 09 - 04
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2023 - 07 - 25
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2023 - 05 - 06
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2023 - 04 - 11
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2022 - 06 - 30
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不含染料的 MasterMix 产品在 PCR 结束后需混合适量的上样缓冲液再上样电泳, 含染料的 MasterMix 产品在 PCR 结束后可以直接上样电泳。
本产品供科学研究和生产使用,用于组织和细胞的体外培养。禁止临床使用。
1. 本试剂仅用于体外诊断,不作其他用途。 2. 开始实验前,应仔细阅读此说明书。 3. 本试剂仅限有专业经验或经专业培训的人员使用。 4. 避免试剂接触眼睛和粘膜,如接触到敏感区域,立即用大量清水冲洗。
一、哺乳动物血液(包括人血液)       1. 将抗凝血(1-10 mL)加入到适当容量的塑料离心管中。       2. 加入等体积的非冻型血液保存液,充分振荡混合均匀。       3. 常温闭光保存直到使用。       4. 提取 DNA 时,可以取出部分液体,用自备的蛋白酶 K (终浓度为 0.1 mg/mL), 37 ℃处理过夜,然后再用经典的醇/氯仿抽提+乙醇沉淀方法得到 DNA。 二、禽类血液       1. 由于禽类血液有核细胞量远高于哺乳动物,血液的使用量很少,一般只有哺乳动 物血液用量的 1/100 到 1/ 1000,所以需先用等体积的水将血液 DNALOCKER       2. 稀释,然后直接将禽类血液加入。其余操作同上。
1. 如 Buffer GTL 和 Buffer GL 产生沉淀,可在 56℃水浴溶解; 2. 样品应避免反复冻融,否则会导致提取的 DNA 片段小,提取量下降; 3. 所有离心步骤均为台式离心机,室温下操作; 4. 按要求在 Buffer W1/W2 中加入无水乙醇。
1. 估计 PCR 反应液或酶切反应液的体积,向其中加入等体积溶液 Buffer GN,充分混 匀(无需去除石蜡油或矿物油)。加入等体积的异丙醇混匀,再加入 10ul 磁珠混匀 5min。(注意:对于回收小于 150bp 的小片段可将溶液 Buffer GN 的体积增加到 3 倍以提高回收率;溶液 混匀后应呈现黄色。如果溶液的颜色为桔红色或紫色,请使用 10 ul 3M 乙酸钠(pH 5.0)将溶液的 颜色调为黄色后再进行后续操作。) 2. 将离心管置于磁力架上静置 1 min,磁珠完全吸附后,吸去液体。 3. 将离心管从磁力架上取下,加 600 ul Buffer W2,旋涡充分混匀 30 s。(注意:Buffer W2 在使用前按要求加入无水乙醇,用后应立即盖紧瓶盖,以防乙醇挥发) 4. 将离心管置于磁力架上静置 1 min,磁珠完全吸附后,吸去液体。 5. 将离心管置于磁力架上,开盖室温放置 5-10min。 (注意:乙醇残留会抑制后续的酶反应,所以晾干时要确保乙醇挥发干净。但也不要干燥过度,以 免 DNA 难以洗脱)6. 将离心管从磁力架上取下,加入 30 ~ 50 ul Buffer EB,充分震荡 1-2 min。7. 将离心管置于磁力架上静置 1 min,磁珠完全吸附后,小心将溶液转移至新的离心管 中,并于适当条件保存。 (注意:为增加洗脱效率,可将洗脱液在 60℃预热。如需使用去离子水洗脱,可用 NaOH 调整其 pH 值在 7.0 - 8.5 之间)
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